Реакция митохондрий клеток печени и нервных окончаний на аппликацию наночастиц серебра
Наночастицы(НЧ) серебра обладают высокой нейротоксичностью, т.к. они проникают через клеточную мембрану, при окислении на их поверхности выделяются ионы Ag+, катализирующие реакции, приводящие к развитию окислительного стресса в тканях. Наиболее уязвимыми к действию АФК клетками эукариотического организма являются нейроны, наиболее уязвимые структуры ЦНС – обонятельные луковицы, стриатум и гиппокамп. Обонятельные луковицы не защищены ГЭБ. Обработка НЧ с d-металлами дофаминергических клеток стриатума приводит к изменениям активности ферментов, участвующих в синтезе дофамина. В гиппокампе высокая плотность клеток микроглии, в которых быстро развивается окислительный стресс и микроглиозис, что приводит к дегенерации нейронов.
- введение НЧ животным системно и интраназально. При системном введении НЧ возможно оценить насколько проницаемы для них биологические барьеры, как, например, ГЭБ. При интраназальном введении НЧ попадают непосредственно в мозг через обонятельные луковицы, лишенные ГЭБ. При интрацеребральном введении возможно оценить распределение НЧ непосредственно в мозге;
- методы дифференциального и равновесного ультрацентрифугирования для субклеточного фракционирования (выделение ядер, митохондрий, синаптосом) из различных структур мозга и других органов с последующим определением в них концентрации переходных металлов;
- концентрацию металлов в биологических образцах измеряли методом атомно-абсорбционной спектрометрии с электротермической атомизацией и зеемановской коррекцией неселективного поглощения на спектрофотометре ZEEnit 650 P фирмы «Analytik Jena».
- для оценки экспрессии ферментов, участвующих в развитии окислительного стресса у животных после введения d-микроэлементов в составе НЧ использовались следующие методы: специфические методы определения активности ферментов, электрофорез в ПААГ.
Оказалось, что распределение Ag-НЧ в отделах мозга было следующим: при i.p. введении в обонятельных луковицах (OB) — 1,7% всего введенного серебра, во фронтальной коре (PFC) — 3,3%, в гиппокампе (Hip) — 2,1%, в стриатуме (S) — 2,5%, в спинном мозге (SCS) — 3,0 %; при i.n. введении OB — 3,2%, FC — 9,2%, Hip — 2,2%, в St — 2,8%, в SCS — 3,9%; при i.с. введении в OB — 3,6%, PFC — 1,8 %, Hip — 5,6%, S — 2,6%, в гипоталамусе (H) — 3,4%, в мозжечке (C) — 1,4%. При этом наибольшая концентрация серебра в печени обнаруживается при i.p. введении (50% всего введенного серебра), а при i.n. введении – в легких (20%). При i.с. введении Ag-НЧ на периферии обнаружены не были.
На втором этапе нашего исследования мы обнаружили, что при инкубации митохондрий, выделенных из печени интактных животных, около 70% серебра Ag-НЧ обнаруживается в матриксе митохондрий. Причем аппликация Ag-НЧ к митохондриям приводит к доза-зависимому снижению активности митохондриальной СОД, которое становится более выраженным при увеличении времени инкубации с 1,0 до 2,5 часов. При инкубации с Ag-НЧ выделенных нервных окончании также около 70% серебра Ag-НЧ обнаруживается в цитозоле синаптосом, но, в отличии от клеток печени, в низких концентрациях (0,2 нг Ag-НЧ на 1 мг белка) Ag-НЧ вызывали увеличение, а в высоких (2 нг Ag-НЧ на 1 мг белка) – снижение активности митохондриальной СОД.
Согласно полученным результатам распределение Ag-НЧ в отделы мозга зависит от способа их введения; примечательно, что при i.с. введении наиболее сильно накапливают Ag-НЧ клетки гиппокампа - отдела мозга, отвечающего за процессы обучения и памяти. При этом Ag-НЧ в низких концентрациях вызывают увеличение активности митохондриальной СОД нервных окончаний, что может рассматриваться в качестве адаптивной реакции клеток мозга в ответ на действие «токсического» агента. Вероятно, снижение активности митохондриальной СОД нервных окончаний при добавлении высокой дозы Ag-НЧ есть следствие срыва регуляции адаптивных процессов.
1. Farina M. et al. Metals, Oxidative Stress and Neurodegeneration: A focus on Iron, Manganese and Mercury. Neurochemistry international. 2013;62(5):575-594.
2. Montes S. et al. Copper and Copper Proteins in Parkinson’s Disease.Oxidative Medicine and Cellular Longevity 2014;2014: 147251.
3. Opazo KM et al. Copper: from neurotransmission to neuroproteostasis. FrontAgingNeurosci. 2014; 6:143.
4. Win-Shwe T-T, Fujimaki H. Nanoparticles and Neurotoxicity. International Journal of Molecular Sciences. 2011;12(9):6267-6280.
5. McShan D et al. Molecular Toxicity Mechanism of Nanosilver. Journal of food and drug analysis. 2014;22(1):116-127.
6. Haase A.et al. Effects of Silver Nanoparticles on Primary Mixed Neural Cell Cultures: Uptake, Oxidative Stress and Acute Calcium Responses. Toxicological Sciences. 2012;126(2):457-468.
So, biodistribution of silver is tissue-specific and depends on the method administration. Low concentrations of SNP increase the activity of SOD.