Проведение научных исследований молодыми учеными. Изучение регуляторных механизмов трансплантации островкового аппарата поджелудочной железы на биологических моделях сахарного диабета.

1. Отработка методов создания и диагностики (биохимическими, морфологическими и гистологическими методами) сахарного диабета на животных SPF статуса.
Проведённые исследования на лабораторных животных (крысы линии Wistar SPF-статуса) показали, что оптимальной методикой по созданию сахарного диабета является модель стрептозотоцинового диабета с применением однократной внутривенной или внутрибрюшинной инъекции в дозах 40, 50 и 60 мг/кг.

2. Разработка удобного способа трансплантации в адекватную иммунопривилегированную область организма реципиента (передняя камера глаза, капсула почки, головной мозг и т.д.).
Рассмотрены оптимальные методики тансплантации островкового аппарата в различные иммунопривелигерованные области организма. Из проведённых исследований на грызунах выявлена область с наибольшим процентом выживших клеток. Данное место является передней камерой глаза, при этом данная область также позволяет производить контроль за состоянием донорских клеток.

1. Отработка методов создания и диагностики (биохимическими, морфологическими и гистологическими методами) сахарного диабета на животных SPF статуса.
Проведённые исследования на лабораторных животных (крысы линии Wistar SPF-статуса) показали, что оптимальной методикой по созданию сахарного диабета является модель стрептозотоцинового диабета с применением однократной внутривенной или внутрибрюшинной инъекции в дозах 40, 50 и 60 мг/кг.
2. Разработка удобного способа трансплантации в адекватную иммунопривилегированную область организма реципиента (передняя камера глаза, капсула почки, головной мозг и т.д.).
Рассмотрены оптимальные методики трансплантации островкового аппарата в различные иммунопривилегированные области организма. Из проведённых исследований на грызунах выявлена область с наибольшим процентом выживших клеток. Данное место является передней камерой глаза, при этом данная область также позволяет производить контроль за состоянием донорских клеток.
3.Получение культуры донорских клеток, дальнейшее тестирование и идентификация клеток.
Тестирование культуры донорских клеток показало неоднородную чувствительность организма к имплантируемому материалу. Клетки, используемые для трансплантации, показали индивидуальные иммуноспецифичные реакции, трактовка которых в настоящий момент производится.
4.Отработка методов алло- и ксенотрансплантации донорских клеток на различных видах лабораторных животных SPF статуса.
Отработка методов алло- (внутри одного вида) и ксенотрансплантации (из вида в вид) показало схожесть методических процедур проведения операций. Однако видовая принадлежность донорских клеток так же оказывает влияние на степень выживания клеток в чужеродном организме. Наибольший процент выживания трансплантационного аппарата при ксенотрансплантации у животных принадлежит человеческим донорским клеткам. Далее идёт аллотрансплантация клеток поджелудочной железы от крыс к крысе. Процесс переноса мышиных донорских клеток в более сложный видовой организм крыс показало отсутствие адаптации донорских клеток и их дальнейшую гибель.
5.Оценка эффективности использования методов алло- и ксенотрансплантации на экспериментальных биомоделях сахарного диабета с различной степенью развития заболевания.
Биологическое моделирование стрептозотоцинового сахарного диабета на различных видах лабораторных животных показало различную видовую чувствительность к диабетиндуцирующему агенту стрептозотоцину. Так, чувствительность мышей в эксперименте оказалась более высшей. Однако морфологические отличия поджелудочной железы между крысиными и мышиными островками поджелудочной железы показали большую схожесть с человеческими у крыс.